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Laboratorio de neurofisiología y plasticidad sináptica

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Nuestro grupo está interesado en el estudio de los mecanismos celulares y moleculares que subyacen a la regulación de la transmisión sináptica, particularmente en la capacidad que tienen las neuronas de regular la eficacia sináptica a través del tiempo, un proceso denominado plasticidad sináptica y que es crucial en el Sistema Nervioso (SN), tanto en condiciones fisiológicas como patológicas.

Líneas de investigación

Actualmente, estamos focalizados en investigar las propiedades, mecanismos y consecuencias de la señalización astrocitaria sobre la excitabilidad neuronal y la transmisión sináptica en el control de la actividad motora. El objetivo general de nuestro trabajo es dilucidar si los astrocitos regulan distintas conductancias de potasio, así como la transmisión sináptica glutamatérgica y GABAérgica, modulando, en consecuencia, la excitabilidad de los circuitos que controlan el movimiento tanto en condiciones fisiológicas como patológicas. Para ello, utilizamos un enfoque multidisciplinar para estudiar diferentes aspectos de la interacción neurona-glía como ser: remodelización de la estructura y función sináptica, propiedades intrínsecas de las neuronas, excitabilidad, cambios en la señalización del calcio intracelular, integración de la información en los circuitos neuronales y, finalmente, las consecuencias sobre la conducta.

En nuestros estudios utilizamos diferentes aproximaciones experimentales, tanto funcionales como estructurales, en distintos modelos animales, que incluyen:

  • Registros extra e intracelulares (técnica de patch-clamp) de la actividad eléctrica neuronal.
  • Registros simultáneos de la actividad neuronal e imagen de calcio en rodajas de cerebros y animales anestesiados o despiertos.
  • Técnicas electroquímicas (voltametría cíclica de alta resolución con electrodos de fibra de carbon, amperometria, biosensores).
  • Opto-genética y quimio-genética (ex vivo e in vivo)
  • Combinación de electrofisiología, imagen de calcio y pruebas conductuales en animales despiertos con libertad de movimiento.

AAV5-GFAP-hM3Dq-mCherry and AAV5-gfaABC1D-cyto-GCaMP6f expression in astrocytes in the CA1 region of the hippocampus. Scale bar, 50 μm.

Personal 

Eduardo Martín Montiel: Investigador Principal
Samuel Alberquilla Martínez: Investigador Postdoctoral
Sara Expósito Reguero: Investigadora Predoctoral
Pablo Azón Espinar: Investigador Predoctoral.
Lucía García Carracedo: Ayudante de Investigación, Comunidad Autónoma de Madrid
Alejandro Hernández Seco: Estudiante de Máster. Programa JAE Intro, CSIC

Publicaciones 

Publicaciones destacadas 

  • Mellado S, Moreno-Ruiz B, Expósito S, Fernández M, Martín ED*. Prolactin Reduces Hippocampal Parvalbumin and GABAA Receptor Expression in Female Mice. Neuroendocrinology. 2021. doi: 10.1159/000520279.

  • Zamora-Moratalla A, Martín ED*. Prolactin enhances hippocampal synaptic plasticity in female mice of reproductive age. Hippocampus. 2021. 31(3):281-293. doi: 10.1002/hipo.23288.

  • Moreno-Ruiz B, Mellado S, Zamora-Moratalla A, Albarracín AL, Martín ED*. Increase in serum prolactin levels in females improves the performance of spatial learning by promoting changes in the circuital dynamics of the hippocampus. Psychoneuroendocrinology. 2021. 124:105048. DOI: 10.1016/j.psyneuen.2020.105048.

  • Lines J, Martín ED, Kofuji P, Aguilar J, Araque A. Astrocytes modulate sensory-evoked neuronal network activity. Nat Commun. 2020. 11:3689. DOI: 10.1038/s41467-020-17536-3.

  • Alberquilla S, Gonzalez-Granillo A, Martín ED**, Moratalla R**. Dopamine regulates spine density in striatal projection neurons in a concentration-dependent manner. Neurobiology of Disease. 2020. 134:104666. DOI: 10.1016/j.nbd.2019.104666.

  • Corkrum M, Covelo A, Lines J, Bellocchio L, Pisansky M, Loke K, Quintana R, Rothwell PE, Lujan R, Marsicano G, Martin ED, Thomas MJ, Kofuji P, Araque A (2020) Dopamine-Evoked Synaptic Regulation in the Nucleus Accumbens Requires Astrocyte Activity. Neuron. 18;105(6):1036-1047.e5. doi: 10.1016/j.neuron.2019.12.026.

  • Caffeine-mediated BDNF release regulates long-term synaptic plasticity through activation of IRS2 signaling. Lao-Peregrín C, Ballesteros JJ, Fernández M, Zamora-Moratalla A, Saavedra A, Gómez Lázaro M, Pérez-Navarro E, Burks D, Martín ED*. Addict Biol. 2017; 22:1706-1718. doi: 10.1111/adb.12433.

  • Synapse-specific astrocyte gating of amygdala-related behavior. Martin-Fernandez M, Jamison S, Robin LM, Zhao Z, Martin ED, Aguilar J, Benneyworth MA, Marsicano G, Araque A. Nat Neurosci. 2017 20(11):1540-1548. doi: 10.1038/nn.4649.

  • The insulin-like growth factor I receptor regulates glucose transport by astrocytes. Hernandez-Garzón E, Fernandez AM, Perez-Alvarez A, Genis L, Bascuñana P, Fernandez de la Rosa R, Delgado M, Angel Pozo M, Moreno E, McCormick PJ, Santi A, Trueba-Saiz A, Garcia-Caceres C, Tschöp MH, Araque A, Martin ED, Torres Aleman I. Glia. 2016; 64:1962-71. doi: 10.1002/glia.23035.

  • Structural and functional plasticity of astrocyte processes and dendritic spine interactions. Perez-Alvarez A, Navarrete M, Covelo A, Martin ED, Araque A. J Neurosci. 2014; 34:12738-44. doi: 10.1523/JNEUROSCI.2401-14.2014.

  • Dopamine release regulation by astrocytes during cerebral ischemia. Oliva I, Fernández M, Martín ED. Neurobiol Dis. 2013; 58:231-41. doi: 10.1016/j.nbd.2013.06.007.

  • Confocal microscopy for astrocyte in vivo imaging: Recycle and reuse in microscopy. Pérez-Alvarez A, Araque A, Martín ED. Front Cell Neurosci. 2013; 7:51. doi:10.3389/fncel.2013.00051.

  • Astrocytes mediate in vivo cholinergic-induced synaptic plasticity. Navarrete M, Perea G, Fernandez de Sevilla D, Gómez-Gonzalo M, Núñez A, Martín ED**, Araque A**. PLoS Biol. 2012; 10:e1001259. doi: 10.1371/journal.pbio.1001259.

  • IRS-2 Deficiency impairs NMDA receptor-dependent long-term potentiation. Martín ED, Sánchez-Perez A, Trejo JL, Martin-Aldana JA, Cano Jaimez M, Pons S, Acosta Umanzor C, Menes L, White MF, Burks DJ. Cereb Cortex. 2012; 22:1717-27. doi: 10.1093/cercor/bhr216.

  • Overexpression of Reelin prevents the manifestation of behavioral phenotypes related to schizophrenia and bipolar disorder. Teixeira CM, Martín ED, Sahún I, Masachs N, Pujadas L, Corvelo A, Bosch C, Rossi D, Martinez A, Maldonado R, Dierssen M, Soriano E. Neuropsychopharmacology. 2011; 36:2395-405. doi: 10.1038/npp.2011.153.

  • Flufenamic acid suppresses epileptiform activity in hippocampus by reducing excitatory synaptic transmission and neuronal excitability. Fernández M, Lao-Peregrín C, Martín ED. Epilepsia. 2010; 51:384-90. doi: 10.1111/j.1528-1167.2009.02279.x.

  • Adenosine released by astrocytes contributes to hypoxia-induced modulation of synaptic transmission. Martín ED, Fernández M, Perea G, Pascual O, Haydon PG, Araque A, Ceña V. Glia. 2007; 55:36-45

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